流式細(xì)胞術(shù)的受體占有率(receptor occupancy,RO)分析是一種穩(wěn)健的分析方法,旨在識(shí)別、量化和監(jiān)測(cè)治療藥物與其靶點(diǎn)的結(jié)合。眾所周知,在藥物臨床研究中,RO分析可輔助劑量設(shè)定、幫助評(píng)估生物制劑最小生物效應(yīng)水平、合理劑量并建立合理給藥方案。RO分析可用于安全性評(píng)估,評(píng)估長(zhǎng)期飽和RO導(dǎo)致的毒副作用的可能性。RO通常被視為藥效學(xué)(PD)指標(biāo),與藥代動(dòng)力學(xué)(PK)評(píng)估相結(jié)合,用于建模PK/PD關(guān)系,是作用于細(xì)胞表面靶點(diǎn)的大分子藥物PK/PD建模的基石。通常在設(shè)計(jì)RO的實(shí)驗(yàn)時(shí),需要考慮很多因素,如測(cè)試樣本的種類和條件,檢測(cè)試劑的特異性及檢測(cè)濃度的確認(rèn),受體表達(dá)的水平和靶細(xì)胞的豐度,靶點(diǎn)在給藥過(guò)程中表達(dá)水平的變化和ADA的存在對(duì)RO檢測(cè)的影響等等。隨著新型雙特異性(BsAbs)和三特異性(TsAbs)療法的發(fā)展,它們可以識(shí)別兩到三個(gè)獨(dú)特的表位,需要更復(fù)雜的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)來(lái)確保RO的正確評(píng)估。
RO檢測(cè)模式和檢測(cè)原理
RO試驗(yàn),一般涉及三個(gè)類型(如圖1所示):“結(jié)合受體” 、“游離受體”及”總受體”,基于這三個(gè)類型,目前常用受體占有率的檢測(cè)主要有兩種模式:一種是通過(guò)檢測(cè)結(jié)合的受體和總受體水平,計(jì)算受體占有率,通常稱為“結(jié)合”模式;另一種是通過(guò)檢測(cè)游離受體和總受體水平,計(jì)算受體占有率,通常稱為“游離”模式。采用響應(yīng)信號(hào)值(主要包括平均熒光強(qiáng)度、中位熒光強(qiáng)度和百分比等)作為報(bào)告值和計(jì)算依據(jù)。 “游離”和“結(jié)合”的分析模式及其許多變體模式已經(jīng)廣泛用于臨床前、臨床開(kāi)發(fā)和上市后研究,這說(shuō)明了這些分析在藥物開(kāi)發(fā)過(guò)程中的重要性和實(shí)用性。
圖1. RO的3種基本形式
雙/三特異性抗體受體占位分析方案設(shè)計(jì)考量
對(duì)于雙/三抗治療藥物的受體占位檢測(cè),若不區(qū)分受體,可采用 “結(jié)合”模式進(jìn)行檢測(cè)(如圖2所示),“結(jié)合受體”需使用熒光素標(biāo)記或者生物素標(biāo)記的藥物的特異性抗體來(lái)檢測(cè),”總受體”檢測(cè)一般需要加入過(guò)量的藥物飽和受體,然后使用熒光素標(biāo)記或者生物素標(biāo)記的藥物的特異性抗體來(lái)檢測(cè);
圖2. “結(jié)合”模式總受體檢測(cè)原理
若區(qū)分受體,采用雙抗藥物過(guò)飽和測(cè)總受體的方法是不可取的,因其可與兩/三個(gè)受體結(jié)合,因此沒(méi)法確定某一受體的表達(dá)量。因此對(duì)于雙/三抗區(qū)分受體的檢測(cè),“游離”模式可能是唯一的選擇,需要考量的因素主要有:
(1) “游離受體”檢測(cè)一般使用熒光素標(biāo)記的藥物,或者生物素標(biāo)記的藥物,配合熒光素標(biāo)記的鏈霉親和素使用(如圖3所示)。熒光素標(biāo)記或者生物素標(biāo)記抗體或者蛋白是實(shí)驗(yàn)室的常規(guī)操作,僅需要很少的資源即可獲得。其質(zhì)量和穩(wěn)定性可靠,可獲得足夠的量,并且明確可與藥物競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合受體。
“游離受體”檢測(cè)也可采用與藥物競(jìng)爭(zhēng)且親和力相當(dāng)或低于藥物與受體結(jié)合親和力的競(jìng)爭(zhēng)性抗體(非熒光素標(biāo)記的藥物)來(lái)檢測(cè),即結(jié)合同一受體的相同表位(如圖3所示)。前提是篩到這樣的抗體,相對(duì)于用熒光素標(biāo)記藥物檢測(cè)的方法,該方法人力成本和試劑成本都要高一些,因此第一種方式是比較容易實(shí)現(xiàn)的,開(kāi)發(fā)和驗(yàn)證一種檢測(cè)方法,具備較高的成本優(yōu)勢(shì)。
圖3. “游離”模式檢測(cè)原理
對(duì)于可逆結(jié)合的靶點(diǎn),隨著檢測(cè)抗體濃度不斷增加,藥物與靶點(diǎn)間存在競(jìng)爭(zhēng)置換的可能,因此需要對(duì)檢測(cè)抗體的濃度進(jìn)行充分摸索,以尋找最優(yōu)檢測(cè)抗體濃度(如圖4所示)。
圖4. 檢測(cè)抗體的滴定
(2)”總受體”的檢測(cè),采用非競(jìng)爭(zhēng)抗體來(lái)檢測(cè)。非競(jìng)爭(zhēng)抗體,即一種與藥物結(jié)合同一受體,又與藥物互不干擾的檢測(cè)抗體。實(shí)際工作中,尋找商業(yè)化的可用的非競(jìng)爭(zhēng)性試劑來(lái)評(píng)估總受體是有一定難度的,需要花費(fèi)很多的時(shí)間和財(cái)力,甚至可能找不到這樣的試劑。若是未篩選到藥物的非競(jìng)爭(zhēng)性抗體,總受體檢測(cè)可以對(duì)給藥前的樣本進(jìn)行藥物的過(guò)飽和處理測(cè)得總受體水平,但由于受體/靶點(diǎn)在給藥過(guò)程中,可能會(huì)發(fā)生受體/靶點(diǎn)上調(diào)或下調(diào)(內(nèi)化或脫落等),給藥后受體的表達(dá)水平發(fā)生變化(如圖5所示),可能會(huì)高估或低估RO。另外,如果對(duì)于一些表達(dá)豐度比較低的受體,無(wú)法通過(guò)圈門得出陽(yáng)性比例,只能通過(guò)平均熒光強(qiáng)度(MFI)或熒光強(qiáng)度中位值(MdFI)計(jì)算得到給藥后不同時(shí)間點(diǎn)的RO,而這兩個(gè)值會(huì)受儀器狀態(tài)、設(shè)置、分析人員和實(shí)驗(yàn)室等影響,因此測(cè)定的給藥前總受體水平在一定程度上可能不能真實(shí)反饋實(shí)際給藥后的總受體水平。
圖5. 給藥后受體調(diào)節(jié)機(jī)制
(3) “自由模式”容易受到ADA和Nab的影響,尤其是使用全血進(jìn)行RO檢測(cè)時(shí)。如下圖6所示,由于有Nab的產(chǎn)生,加入的檢測(cè)試劑被Nab識(shí)別中和,因此不能結(jié)合到受體上,最后造成過(guò)高的估計(jì)藥物的RO水平。而圖7指的是另外一種情況,由于存在ADA,ADA與藥物結(jié)合,進(jìn)而ADA的另外一端可以和標(biāo)記的藥物結(jié)合,或者ADA兩端都可以和標(biāo)記的藥物結(jié)合,造成信號(hào)放大,造成過(guò)低的估計(jì)藥物RO水平,進(jìn)而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。使用與藥物分子沒(méi)有同源序列但與藥物競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合受體的抗體或許可以避免這個(gè)問(wèn)題。
圖6. 中和的ADA可能對(duì)RO檢測(cè)造成的影響
圖7. 非中和的ADA可能對(duì)RO檢測(cè)造成的影響
案例分享
熙寧生物有著豐富的基于流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)雙/三特異性抗體受體占位的臨床項(xiàng)目經(jīng)驗(yàn),開(kāi)發(fā)了多個(gè)雙/三特異性抗體藥的受體占位檢測(cè)方法,部分項(xiàng)目經(jīng)驗(yàn)如下:
1.某雙抗藥物檢測(cè)試劑濃度摸索的部分?jǐn)?shù)據(jù):
圖8 A. 受體A檢測(cè)試劑濃度滴定
圖8 B. 受體B檢測(cè)試劑濃度滴定
圖8是某雙抗藥物的受體占位檢測(cè)試劑濃度滴定的數(shù)據(jù),從圖上可以看出,對(duì)于受體A,檢測(cè)抗體與藥物競(jìng)爭(zhēng)不明顯,可以用于檢測(cè)游離受體;對(duì)于受體B,檢測(cè)抗體與藥物競(jìng)爭(zhēng)明顯,不能用于檢測(cè)游離受體。
表1 受體A RO%穩(wěn)定性數(shù)據(jù)
表2 受體B RO%穩(wěn)定性數(shù)據(jù)
表3 受體A和受體B的總的RO%的穩(wěn)定性數(shù)據(jù)
表1、2和3中,由于兩個(gè)受體的表達(dá)豐度不一樣,表中HQC和LQC不能通用,分開(kāi)配制,加藥濃度根據(jù)不同檢測(cè)項(xiàng)有所調(diào)整。HQC和LQC樣品在2-8℃保存9天,均滿足接受標(biāo)準(zhǔn)CV≤30%。
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