中文
基因治療和細胞治療
1990年美國醫(yī)學家W.F. Anderson對患有腺苷脫氨酶缺乏癥的4歲女孩進行基因治療，成為世界上首個基因治療成功的范例和重要里程碑。經(jīng)過幾十年的發(fā)展，基因治療為患者“從根本上進行疾病治療”帶來了新的希望。
按照治療方式，基因治療可分為2類，體內(nèi)治療是直接向血液或者目標器官中注射攜帶所需基因的載體，如單基因遺傳病、血友病及眼科疾病領域的應用。體外治療，又可稱為細胞治療，是把患者的細胞從體內(nèi)移出，通過在體外對于細胞進行基因改造，重新輸入至患者的體內(nèi)。其中嵌合抗原受體T細胞療法（CAR-T）是一種治療腫瘤的新型精準靶向療法。
截至目前，已有20余款基因治療藥物和 8款CAR-T產(chǎn)品獲得各國藥品監(jiān)管機構的批準?；蚝图毎委熕幬飸{借先進的生物技術和廣闊的治療前景，將在未來人類疾病的防治中發(fā)揮重要作用。
慢病毒整合
對于基因和細胞治療而言，基因遞送的方式和效率直接決定了藥物的治療效果，因此載體的選擇顯得尤為重要。由于感染譜廣泛，可以有效感染分裂期和靜止期細胞，長期穩(wěn)定表達外源基因，慢病毒系統(tǒng)被廣泛地應用于基因和細胞治療等實驗中。
病毒整合是慢病毒正常生活周期（Lifecycle）的重要環(huán)節(jié)（圖1）。病毒識別宿主細胞表面受體，將RNA及蛋白轉移至胞內(nèi)。隨后RNA逆轉錄為DNA，整合酶識別病毒DNA攜帶的LTR，以隨機或半隨機方式切斷宿主基因組，產(chǎn)生的粘性末端會與病毒DNA連接，從而完成外源基因的插入。病毒整合是外源基因表達、實現(xiàn)基因治療效果的必要條件。
圖1 慢病毒生活周期（Lifecycle）
病毒載體整合至宿主細胞基因組，可能破壞基因組的內(nèi)源性基因表達1。隨著研究的進一步深入，科學家發(fā)現(xiàn)慢病毒等逆轉錄病毒的整合不是完全隨機的，其中慢病毒整合更容易發(fā)生在活躍轉錄的基因中，存在致病的潛在風險2。2005年巴黎進行的治療X連鎖重癥聯(lián)合免疫缺陷（SCID）的臨床試驗，發(fā)現(xiàn)在接受基因治療的患者中出現(xiàn)明顯的白血病或惡性克隆擴增的癥狀3。
對于CAR-T細胞治療，研究顯示部分病毒插入突變與治療后復發(fā)相關。Shah et al2等報道一名急性淋巴細胞白血病（ALL）患者，接受抗CD22 CAR-T細胞療法后復發(fā)，可能是由于CAR意外插入CBL基因、53天后出現(xiàn)的二次克隆擴增。Ruella et al4等報道一名ALL患者接受CAR-CD19治療的復發(fā)，發(fā)現(xiàn)一個攜帶CAR插入位點的CAR-B細胞克隆，研究人員最終確定，癌變B細胞里的CAR是制作CTL019細胞時意外引入的。癌變的B細胞獲得了CAR，便遮擋了CD19，CAR-T因此無法識別癌細胞。
整合位點分析的法規(guī)要求
基于整合載體的潛在致病性，國內(nèi)外法規(guī)均有相關安全性分析的條款。美國FDA 最新發(fā)布《嵌合抗原受體(CAR)T 細胞治療的研發(fā)考量》，指出“對包括整合載體的產(chǎn)品推薦進行長期隨訪，因為整合載體可能會增加延遲不良事件的風險”。EMA和IHC等機構同樣推薦在治療過程中或者長期隨訪中，分析整合位點。
國家藥監(jiān)局5月最新推出《免疫細胞治療產(chǎn)品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》明確指出，“基因插入位點和拷貝數(shù)：由于其關系到產(chǎn)品的安全性和有效性，需采用適用的檢測方法進行研究，探索其與安全性和療效的相關性”。同期發(fā)布的《體內(nèi)基因治療產(chǎn)品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》指出，“分析載體在基因組中的整合方式和整合位點的分布趨勢，評估其插入導致細胞發(fā)生基因突變、基因失活/激活，或細胞癌變的風險”。
病毒整合位點分析方法
病毒整合最初采用Southern blot和基因組文庫來分析整合位點特征5。 PCR技術因操作簡單，結果準確，逐漸取代Southern blot成為病毒整合的主要分析方法。根據(jù)PCR技術路線差異，病毒整合主要分為反向PCR（Reverse PCR）、接頭PCR(Ligated Mediated PCR, LM-PCR)和線性擴增PCR(Linear Amplification Mediated PCR, LAM-PCR)等。
反向PCR，將DNA酶切打斷后連接成環(huán)，設計反向引物擴增，可得到病毒整合位點兩側的未知序列。由于連接酶成環(huán)效率較低，反向PCR使用受限。LM-PCR，在DNA酶切打斷后，兩端連接含接頭，根據(jù)病毒DNA和接頭固定序列設計引物擴增，即解鎖病毒整合位點的位置信息（圖2）。LM-PCR原理簡單，易于操作，從發(fā)明之日起應用至今。LAM-PCR，首先線性擴增DNA，擴增得到的單鏈產(chǎn)物通過LM-PCR將單鏈擴增的特異性產(chǎn)物繼續(xù)放大。由于引入線性擴增，LAM-PCR的靈敏度和特異性極大提高，超過反向PCR和LM-PCR，應用廣泛（圖2）。
圖2 反向PCR、LM-PCR和LAM-PCR技術路線示意圖
傳統(tǒng)PCR技術分析整合位點依賴限制性內(nèi)切酶酶切，存在一定偏好性；同時電泳或者一代測序靈敏度較低，分析克隆數(shù)量有限。隨著2005年第一臺高通量測序儀羅氏454問世，二代測序（NGS）逐步取代PCR，成為整合位點分析的主流技術。由于測序數(shù)據(jù)量大，二代測序極大地擴展了整合位點數(shù)量，特別是低頻整合克隆的檢出，為藥物開發(fā)提供更多可參考信息。
高通量測序文庫構建流程與PCR相比更為復雜。常用文庫構建方法包括LM-PCR、LAM-PCR和非限制性酶切LAM-PCR（nrLAM-PCR）等（nrLAM-PCR以LAM-PCR為基礎，剔除了內(nèi)切酶酶切操作）。LAM-PCR和nrLAM-PCR方式建庫，在線性擴增中引入生物素標記引物和鏈霉親和素標記磁珠，流程復雜，成本較高6。LM-PCR通過2步PCR富集插入位點序列，6~7h即可完成建庫，操作簡單，大大加快建庫周期，是慢病毒插入位點檢測的理想選擇。
熙寧生物最新推出慢病毒整合位點NGS檢測技術bLM-PCR。bLM-PCR以LM-PCR技術為基礎，與其他建庫方法相比，操作簡單、實驗周期短且成本低廉。此外，慢病毒兩端各有一個LTR序列，兩個LTR均通過LM-PCR發(fā)生擴增，因此常規(guī)建庫方法有一半reads是LTR與Provirus（前病毒插入序列）的無用整合信息。熙寧bLM-PCR通過引入靶向Provirus的特異性探針（圖3 blocker），阻斷5’LTR無效整合位點reads的擴增，可節(jié)省一半的測序數(shù)據(jù)量和一半的測序成本。
歡迎垂詢！
圖3 bLM-PCR建庫技術路線
參考文獻
1.Desfarges, S. & Ciuffi, A. Retroviral integration site selection. Viruses 2, 111–130 (2010).
2.Shah, N. N. et al. Clonal expansion of CAR T cells harboring lentivector integration in the CBL gene following anti-CD22 CAR T-cell therapy. Blood Adv. 3, 2317–2322 (2019).
3.孟坡. 慢病毒介導的轉基因整合位點研究方法. 醫(yī)學分子生物學雜志 5, 42–64 (2008).
4.Med, N. et al. Induction of resistance to chimeric antigen receptor T cell therapy by transduction of a single leukemic B cell. Nat. Med. 24, 1499–1503 (2019).
5.Nusse, R. et al. Retroviral insertional mutagenesis in murine mammary cancer. Proc. R. Soc. London. Ser. B, Biol. Sci. 226, 3–13 (1985).
6.Hamada, M. et al. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine vol. 34 18–26 (2018).
熙寧生物按照《醫(yī)療機構臨床基因擴增檢驗實驗室管理辦法》、《分子病理診斷實驗室建設指南(試行)》和《醫(yī)療機構臨床基因擴增檢驗實驗室工作導則》要求建立NGS實驗室。實驗室配備illumina CN500測序儀（注冊備案）、Covaris M220基因打斷儀和安捷倫自動化電泳儀4150等儀器，可完成常規(guī)文庫構建和上機測序實驗。技術團隊核心人員有5-10年NGS方法開發(fā)經(jīng)驗，曾在頭部基因檢測公司牽頭完成腫瘤大panel檢測、全外顯子測序和RNAseq等項目。
